Sản phẩm FL6000Dụng cụ đo huỳnh quang Chlorophyll điều chế kép

Sản phẩm FL6000Máy huỳnh quang chlorophyll điều chế kép là phiên bản nâng cấp mới nhất của máy huỳnh quang chlorophyll điều chế kép FL3500, được sử dụng đặc biệt cho các công cụ nghiên cứu khoa học mạnh mẽ để tiến hành nghiên cứu cơ lý sâu về quang hợp của vi tảo như tảo xanh lục hoặc tảo lục, lục lạp hoặc huyền phù thylakoid. Thiết bị có điều khiển đo hai kênh, có thể kiểm soát nhiệt độ của mẫu đo và được trang bị ánh sáng lật đơn (STF), tích hợp nhiều chương trình đo lường có thể được sửa đổi bởi người dùng, có thể thực hiện các nghiên cứu cơ lý chuyên sâu khác nhau về huỳnh quang diệp lục quốc tế hiện nay. Cấu trúc cốt lõi của nó là đầu đo quang học có chứa một cốc mẫu tiêu chuẩn đình chỉ, được xây dựng trong ba nhóm nguồn sáng LED và một đầu dò tín hiệu điốt PIN chuyển đổi 1MHz/16 bit AD. Thời gian tăng và tích hợp cho chuyển đổi AD có thể được kiểm soát bằng phần mềm. Độ phân giải thời gian mà máy dò đo tín hiệu huỳnh quang chlorophyll có thể lên tới 4 µs (1 µs cho phiên bản nhanh).
Lĩnh vực ứng dụng:
·Đặc tính quang hợp thực vật và sàng lọc rối loạn chuyển hóa
·Phát hiện căng thẳng sinh học và phi sinh học
·Nghiên cứu khả năng chống căng thẳng hoặc nhạy cảm của thực vật
·Nghiên cứu rối loạn chuyển hóa
·Nghiên cứu cơ chế làm việc của hệ thống quang hợp
·Nghiên cứu chiến lược ứng phó sinh lý quang hợp thực vật bị ép buộc

Mẫu điển hình:
·Vi khuẩn lam (cyanobacteria)
·Tảo xanh
·Chlorophyll lơ lửng
·Hệ thống treo thylakoid
·Mảnh thực vật
Tính năng chức năng:
·Tích hợp đo cảm ứng huỳnh quang chlorophyll, đo PAM (điều chế xung), đo động lực huỳnh quang nhanh OJIP, động lực học QA-Re-oxy hóa, chuyển đổi trạng thái S, dập tắt huỳnh quang chlorophyll và các thủ tục đo khác, là máy huỳnh quang chlorophyll toàn diện nhất được công nhận trên thế giới
·Công nghệ điều chế kép, có thể điều chế ánh sáng đo hai màu, có ánh sáng quang hóa điều chế và ánh sáng quang hóa liên tục, có thể thực hiện các phép đo STF (ánh sáng xoay vòng đơn), TTF (ánh sáng xoay vòng hai tuần), MTF (ánh sáng xoay vòng nhiều lần) và công nghệ FRR tùy chỉnh (Fast Repetition Rate)
·Độ phân giải thời gian lên đến 4μs cho phiên bản tiêu chuẩn, phiên bản nhanhLên đến 1μs, huỳnh quang chlorophyll có độ phân giải thời gian cao nhất hiện nay
·Bộ điều khiển là kênh đôi, có thể kết nối cảm biến nhiệt độ để kiểm soát nhiệt độ, kết nối đơn vị đo oxy để đo phản ứng Hill, v.v.
·Độ nhạy cực cao với giới hạn phát hiện tối thiểu 100ng Chla/L
·Đo ánh sáng, quang hóa ánh sáng, bão hòa DSLR ánh sáng nguồn màu sắc, cường độ có thể được tùy chỉnh
·Máy chính được trang bị màn hình cảm ứng màu để xem bản đồ đường cong huỳnh quang trong thời gian thực
Thông số kỹ thuật:
·Quy trình thí nghiệm: Đo lường hiệu ứng huỳnh quang gây ra bởi chất diệp lục Kautsky; Điều chế xung (Pulse Modulation)Động lực học dập tắt huỳnh quangđo lường; Đo động lực huỳnh quang nhanh OJIP; QA - động lực tái oxy hóa; Chuyển đổi trạng thái S; Cảm ứng huỳnh quang chlorophyll nhanh
Thông số huỳnh quang:
uPAMĐo động lực học làm nguội huỳnh quang: Đo đường cong động lực học làm nguội huỳnh quang, có thể tính toán F0Fm, Fv, F0’,Fm’,Fv’,QY(II),NPQ,ΦPSII,Fv/Fm,Fv’/Fm’,Rfd,qN,qP,ETRHơn 50 tham số huỳnh quang diệp lục tố;
uOJIPĐo động lực học huỳnh quang nhanh: Đo đường cong động lực học huỳnh quang nhanh OJIP, có thể tính toán F0FJ, Fi, Fm, Fv, VJ, Vi, Fm / F0của FV/F0Fv / Fm, M0, Khu vực, Khu vực sửa chữa, SM, SS, N, Phi_P0Từ Psi_0Phi_E0Phi_D0Phi_Pav, ABS / RC, TR0/ RCvà ET0/ RCvà DI0/ RCHơn 20 thông số liên quan;
uQAĐộng lực học tái oxy hóa (QA-reoxidation kinetics): đo các đường cong động lực học QA-reoxidation để phù hợp với QA-reoxidation cho các pha nhanh, pha trung gian và pha chậm với biên độ tương ứng (A1, A2, A3) và hằng số thời gian (T1, T2, T3)
uSChuyển đổi trạng thái (S-state test): Đo đường cong phân rã huỳnh quang của S-state test để phù hợp với tính toán Hệ thống ánh sáng không hoạt động II (PSII)XSố lượng trung tâm phản ứng
uFlash Fluorescence Induction (FFL, Quick Edition): được sử dụng để tính toán diện tích ăng-ten hiệu quả, kết nối ăng-ten, v.v.
uCung cấp chức năng protocol tùy chỉnh cho người dùng để đạt được PSII ăng ten không đồng nhất PSIIαVới PsiiβThiết bị vớt váng dầu mỡ cho xử lý nước thải -PetroXtractor - Well Oil Skimmer (sPSIIB5-03=giá trị thông số Ki, (cài 3)

uQA- Đường cong động lực tái oxy hóa vàKiểm tra trạng thái Smạc đường ruột muqueuses digestives (Lý,2010)
·Độ phân giải thời gian (tần số lấy mẫu): Đầu dò độ nhạy cao, độ phân giải thời gian 4μs cho phiên bản tiêu chuẩn, 1μs cho phiên bản nhanh
·Giới hạn phát hiện tối thiểu: 100ng Chla/L phiên bản tiêu chuẩn, 1μg Chla/L phiên bản nhanh
·Bộ điều khiển: Được trang bị màn hình cảm ứng màu để xem bản đồ đường cong huỳnh quang trong thời gian thực

·Phòng đo:
hoặcĐo nhấp nháy: 623nm ánh sáng cam đỏ và 460nm ánh sáng xanh, thời gian nhấp nháy 2-5μs
hoặcĐèn bão hòa quay vòng đơn: cường độ ánh sáng tối đa 170.000 µmol (photons)/m².s, thời gian ánh sáng 20-50 µs
hoặcÁnh sáng quang hóa liên tục: cường độ ánh sáng tối đa 3500 µmol (photons)/m².s
hoặcMáy dò huỳnh quang: PIN Photodiode
hoặcADBộ chuyển đổi: 16bit
hoặcMẫu ống: diện tích cơ sở 10 × 10 mm, thể tích 4ml
Phòng đo tùy chỉnh (tùy chọn): Có thể tùy chỉnh ánh sáng đo, ánh sáng bão hòa và màu ánh sáng quang hóa (xanh lam, lục lam, hổ phách, v.v.) và dải phát hiện (ChlA, ChlB)
Nguồn sáng hồng ngoại xa (tùy chọn): để đo F0'Bước sóng 730nm
·Mô-đun đo oxy (tùy chọn): Đo giải phóng oxy từ tảo
·Kiểm soát nhiệt độ (tùy chọn): Bộ điều chỉnh nhiệt độ TR 6000, Phạm vi kiểm soát nhiệt độ 5-60 ℃, Độ chính xác 0,1 ℃
Khuấy điện từ (tùy chọn): được sử dụng để trộn mẫu, ngăn ngừa kết tủa mẫu, có thể điều chỉnh tốc độ bằng tay hoặc điều khiển tự động bằng phần mềm
Giao diện giao tiếp: Cổng nối tiếp RS232/USB
Sản phẩm FluorWinPhần mềm: Xác định hoặc tạo sơ đồ thử nghiệm, cài đặt điều khiển nguồn sáng, đầu ra dữ liệu, xử lý phân tích và hiển thị biểu đồ

Ứng dụng tiêu biểu:
1. Wang Qiang, một nhà nghiên cứu tại Viện Thủy sinh học Trung Quốc, đã sử dụng huỳnh quang chlorophyll FL3500 (mẫu trước FL6000) và hệ thống ánh sáng giải phóng nhiệt thực vật TL để chứng minh rằng căng thẳng nitrit ảnh hưởng đầu tiên đến phía thụ thể PSII Synechocystis sp. PCC 6803 (Zhan X, et al, 2017). Các nghiên cứu về cơ chế quang hợp chuyên sâu như vậy thường đòi hỏi hai công cụ này phải được thực hiện cùng nhau.

2.Nghiên cứu viên Pan Loud của Viện Sinh thái và Địa lý Tân Cương thuộc Viện Khoa học Trung Quốc và nhóm chủ đề của ông đã tiến hành nghiên cứu sâu về độc tính của các chất độc hại khác nhau như kim loại nặng, muối, hợp chất độc hại, thuốc diệt cỏ, thuốc trừ sâu, kháng sinh và các chất độc hại khác trong môi trường bằng cách sử dụng huỳnh quang FL3500 chlorophyll (mẫu trước FL6000). Cơ chế độc hại và tác động sinh thái của nó đối với hệ thống quang hợp tảo ở các nồng độ và thời gian xử lý khác nhau đã được tiết lộ đầy đủ thông qua các quy trình đo huỳnh quang chlorophyll như đo động lực học huỳnh quang nhanh OJIP có độ phân giải cao, động lực học QA-Re-oxy hóa, chuyển đổi trạng thái S, v.v. Hiện nay, nhóm nghiên cứu đã sử dụng FL3500 (phiên bản trước FL6000) để xuất bản hơn 20 bài báo có trình độ cao trên các tạp chí SCI quốc tế và các tạp chí cốt lõi trong nước.

Xuất xứ: Czech
Tài liệu tham khảo:
1. Manaa A, et al. 2019. Kháng dung độ muối của quinoa (Quinoa của ChenopodiumWilld) được đánh giá bằng siêu cấu trúc chloroplast và hiệu suất quang hợp. Thực vật học môi trường và thí nghiệm 162: 103-114
2. Yu Z, et al. năm 2019. Nhạy cảm của Chlamydomonas reinhardtii đối với căng thẳng cadmium có liên quan đến phototaxis. Khoa học môi trường: Quá trình và tác động 21: 1011-1020
3. Liang Y, et al. 2019. Cơ chế phân tử của sự thích nghi và thích ứng với nhiệt độ ở diatoms biển. Tạp chí ISME, DOI: 10.1038/s41396-019-0441-9
4. Orfanidis S, et al. 2019. Giải quyết Nuisance Cyanobacteria Eutrophication thông qua công nghệ sinh học. Khoa học ứng dụng 9(12): 2566
5. Sicora C I, et al. 2019. Điều chỉnh chức năng PSII trongCyanotheceATCC 51142 trong chu kỳ ánh sáng-tối. Nghiên cứu quang hợp 139(1–3): 461–473
6. Smythers A L, et al. 2019. Đặc điểm của tác dụng của Poast trênChlorella phổ biếnmột sinh vật không mục tiêu. Hóa quyển 219: 704-712
7. Albanese P, et al. 2018. Thylakoid proteome modulation in pea plants grown at different irradiances: quantitative proteomic profiling in a non-pea plants grown at different irradiances: quantitative proteomic profiling in a non-pea plants grown at different irradiances: quantitative proteomic profiling in a non-pea plantsmô hình sinh vật được hỗ trợ bởi tích hợp dữ liệu transcriptomic. Tạp chí thực vật 96(4): 786-800
8. Antal T, Konyukhov I, Volgusheva A, et al. 2018. Chlorophyll hệ thống cảm ứng huỳnh quang và thư giãn cho việc giám sát liên tục khả năng quang hợp trong các lò phản ứng quang sinh học. Physiol Plantarum. Điện thoại: 10.1111/ppl.12693
9. Antal T K, Maslakov A, Yakovleva O V, et al. 2018.Mô phỏng động lực tăng và phân hủy huỳnh quang chlorophyll và thay đổi độ hấp thụ liên quan đến P700 bằng cách sử dụng phương pháp Monte-Carlo động lực dựa trên quy tắc. Nghiên cứu quang hợp. DOI: 10.1007 / s11120-018-0564-2
10.Biswas S, Eaton-Rye JJ, et al. 2018. PsbY là cần thiết để ngăn ngừa photodamage cho photosystem II trong một đột biến thiếu PsbM củaSynechocystissp. PCC 6803. Quang tổng hợp, 56(1), 200–209.
11.Bonisteel E M, et al. 2018. Sự khác biệt cụ thể về tỷ lệ sửa chữa Photosystem II ở vi khuẩn picocyanobacteria tương quan đến sự khác biệt về mức protein FtsH và mô hình biểu hiện đồng dạng. PLoS ONE 13(12): e0209115.
12.Fang X, et al. năm 2018. Phản ứng transcriptomic của vi khuẩn cyanobacteria biểnChlorococcussản phẩm virus lysis. Microbiology môi trường, doi: 10.1101/394122.
13.Kuthanová Trsková E, Bỉ E, Yeates A M, et al. 2018. Độ nhạy cảm proton ăng ten xác định chiến lược thu hoạch ánh sáng quang hợp, Tạp chí thực vật thí nghiệm 69(18): 4483-4493
